琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒（离心柱式）

DNA纯化胶回收/琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒（离心柱式）

琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒（离心柱式）

用于从DNA琼脂糖凝胶中回收目的DNA的试剂盒。

产品货号	产品规格	目录价	促销价
HX3047	50 T	175.00	157.00

▍产品信息

琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒（离心柱式）是一种用于从DNA琼脂糖凝胶中回收目的DNA的试剂盒。采用了融胶液，可以使琼脂糖凝胶完全融化。同时采用了一种新型的离子交换柱，在特定条件下，使DNA能在离心过柱的瞬间，结合到DNA纯化柱上，在一定条件下又能将DNA充分洗脱，从而实现DNA的快速纯化。无需酚氯仿抽提，无需酒精沉淀，通常12个样品只需不足20 min即可完成，每个DNA纯化柱可以结合的DNA量的上限约为15 µg，适用于从DNA琼脂糖凝胶电泳后割取的含有目的DNA的凝胶块中快速提取DNA。该目的DNA通常为PCR产物、质粒DNA酶切出来的DNA片段、超螺旋质粒DNA单酶切后的线性化产物和DNA连接产物等。本试剂盒适用于纯化100 bp-10 kb DNA，长至30个碱基的引物均可被完全去除，DNA回收效率通常为60-90%，接近100 bp或10 kb的DNA片段回收效率要略低一些，大于10 kb的DNA回收效率迅速下降，另外如果样品中DNA含量特别低也会导致回收效率下降。纯化所得DNA可直接用于酶切，连接，转化细菌，测序，PCR，杂交等后续操作。

▍产品应用

用于从DNA琼脂糖凝胶中回收目的DNA，纯化所得DNA可直接用于酶切，连接，转化细菌，测序，PCR，杂交等后续操作。

▍产品保存

室温保存，一年有效。

▍产品组分

组分编号	组分名称	规格 50 T
HX3047-1	Buffer P1（融胶液）	20 ml
HX3047-2	Buffer WB（洗涤液，首次使用前加入39 ml无水乙醇）	26 ml
HX3047-3	Buffer EB（洗脱液）	3 ml
HX3047-4	DNA纯化柱及废液收集管	50套

▍注意事项

1. 本试剂盒所有操作均在室温进行，操作时无需冰浴。所有离心也均在室温进行。

2. 废液收集管在一次抽提中需多次使用，切勿中途丢弃。

3. Buffer P1对人体有刺激性，操作时请小心，并注意适当防护以避免直接接触人体或吸入体内。

4. 首次使用前在Buffer WB中加入39 ml无水乙醇，混匀，并在瓶上做好标记。

5. 本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

1. 切胶回收后，称重，将胶切碎或在离心管内用1 ml枪头捣碎。

2. 加入等体积的Buffer P1（如胶为100 mg，则加100 µl Buffer P1），vortex或颠倒混匀。

3. 50-60ºC水浴加热约10 min至胶全融，期间，需vortex或颠倒混匀3-4次，以加速凝胶融解。如果胶碎片较小，3-5 min即可全融，凝胶碎片较大则需较长时间，胶全融后至少再在50-60ºC水浴加热2 min。如果DNA片段大于5 kb，宜颠倒混匀，Vortex容易导致大片段DNA断裂。

4. 凝胶液置于DNA纯化柱内，室温放置1 min。如果体积较大，DNA纯化柱内容纳不下，可以把部分样品加入到纯化柱内，经离心处理后，再加入剩余的样品继续处理。

5. 最高速（16000 g，约12000-14000 rmp左右）离心1 min，倒弃收集管内的液体。

注：一定要达到16000 g，较低离心速度会导致回收效率下降。

6. 在DNA纯化柱内加入700 µl Buffer WB，室温放置1 min。

7. 最高速离心1 min，洗去杂质。倒弃收集管内的液体。

8. 再加入500 µl Buffer WB，最高速离心1 min，进一步洗去杂质。倒弃收集管内的液体。

9. 最高速再离心1 min，除去残留液体并让残留的乙醇充分挥发。

10. 将DNA纯化柱置于1.5 ml离心管上，加入30 µl Buffer EB至管内柱面上，放置1 min。最高速离心1 min，所得液体即为高纯度DNA。

注：用1.5 ml离心管作为收集管。Buffer EB需要直接加至管内柱面中央，使液体被纯化柱吸收。如果不慎将Buffer EB沾在管壁上，一定要震动管子，使液体滑落到管底，以便被纯化柱吸收。也可以用重蒸水或Milli-Q级纯水替代Buffer EB，但是水的 pH应不小于6.5。如需得到较高浓度的DNA，可以只加20 µl Buffer EB，但产量会略有下降。放置较长时间例如3-5 min，会对提供产量略有帮助。

下载产品使用说明书

Q：为什么回收率低（DNA产量低）？

A：凝胶未完全溶解（尤其高浓度琼脂糖或高熔点琼脂糖）；DNA片段过小（<100 bp）或过大（>10 kb），与柱膜结合效率低；离心速度或时间不足，DNA未充分结合到柱膜；洗脱液体积过小或未预热（如使用TE或水时未加热至55–60℃）。

Q：为什么会有DNA残留或污染？

A：凝胶未完全溶解，残留琼脂糖堵塞柱子；样品中含蛋白质（如未充分酶解）或RNA（未加RNase A）；洗脱液残留乙醇影响下游实验。

Q：为什么下游实验失败（如酶切、测序）？

A：洗脱液pH或EDTA抑制酶活性（如使用TE缓冲液）；残留乙醇或盐离子干扰反应。

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