PCR/DNA纯化试剂盒（磁珠法）

DNA纯化胶回收/PCR/DNA纯化试剂盒（磁珠法）

PCR/DNA纯化试剂盒（磁珠法）

使用新型核酸纯化介质包被的磁珠，从PCR产物或多种DNA反应体系中提取纯化DNA的试剂盒。

产品货号	产品规格	目录价	促销价
HX3044S	50 T	264.00	237.00
HX3044M	200 T	839.00	755.00

▍产品信息

PCR/DNA纯化试剂盒（磁珠法）是一种使用新型核酸纯化介质包被的磁珠，用于稳定、高效、便捷地从PCR产物或多种DNA反应体系中提取纯化DNA的试剂盒。适用于PCR反应后去除引物、酶、矿物油、甘油、盐等杂质，也同样适用于酶切、连接、磷酸化、补平或切平、随机引物等反应后的DNA纯化。所得DNA可直接用于酶切、连接、转化细菌、测序、PCR、杂交等后续操作。

样品中的DNA与磁珠特异性结合，在外界磁场（如磁分离架）的作用下，磁珠与相应溶液可以快速而高效地分离，经洗涤充分除杂质，最后用洗脱液将DNA从磁珠上洗脱下来，即可获得高度纯化的DNA样品。本试剂盒具有效果稳定、纯度好、操作灵活便捷、可纯化DNA片段大小范围广等优点。根据实际状况灵活调节磁珠用量，通常15 min内即可完成纯化。适用于100 bp以上DNA片段的纯化，对达到10 kb片段DNA的纯化也能保持较好的效果，对长至30个碱基的引物可被完全去除，通常回收率达到90%以上，同时也适用于低浓度样品的浓缩。目前DNA纯化的方法主要为柱纯化试剂盒法，该方法通常需要反复离心，或者需要特殊的抽滤装置，柱纯化过程中的纤维切割对大片段DNA回收不太有利。而磁珠法条件温和，整个操作步骤无需繁琐的反复离心或抽滤操作，以简单的磁铁吸附所代替，确保了操作的快速和便捷，和传统的纯化方法相比，操作过程中不涉及酚/氯仿等有毒试剂。

▍产品应用

使用新型核酸纯化介质包被的磁珠，用于稳定、高效、便捷地从PCR产物或多种DNA反应体系中提取纯化DNA，所得DNA可直接用于酶切、连接、转化细菌、测序、PCR、杂交等后续操作。

▍产品保存

室温保存，一年有效。其中Buffer Beads长期不使用时，4ºC保存，可以保存更长时间。

▍产品组分

组分编号	组分名称	规格 50 T	规格 200 T
HX3044-1	Buffer Beads（磁珠悬浮液）	1.5 ml	6 ml
HX3044-2	Buffer P1（结合液）	20 ml	80 ml
HX3044-3	Buffer WB（洗涤液，首次使用前加入39 ml/78 ml×2无水乙醇）	26 ml	52 ml×2
HX3044-4	Buffer EB（洗脱液）	5 ml	20 ml

▍注意事项

1. 本产品适用于手工抽提，也可用于工作站或核酸自动提取仪。

2. 需自备无水乙醇和磁分离装置。

3. Buffer Beads磁珠悬液在静置后会发生沉降，使用前一定要涡旋震荡或颠倒数次至充分混匀。磁分离前应适度震荡离心管使磁珠充分分散后再靠近磁场。如果出现磁珠挂壁现象，可以在磁珠聚集后晃动管内液体，使挂壁的磁珠流下。

4. 温度较低时，Buffer P1可能会有沉淀产生。使用前必须检查一遍。如有沉淀，可置37ºC水浴加热溶解，混匀后使用。Buffer P1对人体有一定的刺激性，操作时请小心，并注意适当防护。

5. 首次使用前在每瓶Buffer WB中加入指定量的无水乙醇，混匀，并在瓶上做好标记。

6. 可用去离子水代替洗脱液进行洗脱，但去离子水的pH不应低于6.5，如偏低可用低浓度NaOH溶液调节至7.5-8.5。

本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

1. 加入等体积的Buffer P1，颠倒混匀。例如DNA样品体积为100 µl，则加100 µl Buffer P1。

2. 根据样品体积，参照下表用量加入Buffer Beads（使用前务必混匀），颠倒混匀后，室温放置3-5 min。将离心管置于磁力架的磁场中，待磁珠完全聚集后，小心吸除残液。

注：磁珠在使用前一定要涡旋或震荡混匀。如有必要，可适当增加磁珠用量，延长结合时间以提高得率。

样品体积 (µl)	Buffer Beads (µl)	Buffer WB (µl) ①	Buffer WB (µl) ②	Buffer EB (µl)
10-100	10	250	500	20-30
100-250	20	500	500	40-50
250-500	30	750	500	60-80
500-800	40	1000	500	80-100

3. 参照上表，通常加入250-750 µl Buffer WB，轻柔震荡使磁珠分散开，颠倒两次后将离心管置于磁力架的磁场中，待磁珠完全聚集后，小心吸除残液。

注：如果离心管内盖有磁珠，可按住离心管整体上下颠倒两次，使磁珠被完全吸附，然后弃去上清。Buffer WB用量可随磁珠的用量适当增减。通常Buffer WB用量为Buffer Beads用量的25倍左右，即20 µl Buffer Beads加入500 µl Buffer WB，30 µl磁珠悬浮液加入750 µl Buffer WB。

4. 加入500 µl Buffer WB，重复3的操作，最终尽量吸净残留液体。

5. 将离心管置于37ºC鼓风烘箱5 min，或室温放置5-10 min，确保残留的乙醇等微量液体完全挥发。

6. 参照上表，加入20-100 μl Buffer EB，轻柔震荡使磁珠悬于溶液中，室温孵育3-5 min，其间甩动离心管2-3次。将离心管置于磁场中，待磁珠完全聚集后，小心吸取溶液至新离心管中，置于-20ºC保存，所得溶液即为纯化的DNA样品。

注：Buffer EB的用量可参考步骤2后表格，其用量一般随磁珠用量增加而相应增加，为提高洗脱效率，通常不少于Buffer Beads用量的2倍。为提高样品浓度，也可适当减少Buffer EB用量。约50-55ºC洗脱比室温洗脱效率略高。

下载产品使用说明书

Q：为什么得率低（DNA回收量少）？

A：磁珠与DNA结合不充分（缓冲液条件不合适，如PEG或盐浓度不足）；样本起始量过低或DNA片段过小（<100 bp）；洗涤过程中DNA流失（过度洗涤或乙醇残留）。

Q：为什么会有污染物残留（如引物、盐、蛋白质）？

A：洗涤不彻底、乙醇未完全干燥或磁珠未充分重悬。

Q：为什么DNA洗脱效率低？

A：洗脱液体积过小、洗脱时间不足或磁珠过度干燥。

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