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DNA/RNA/蛋白共提取/RNA/DNA/蛋白提取试剂盒
RNA/DNA/蛋白提取试剂盒
RNA/DNA/蛋白提取试剂盒
RNA/DNA/蛋白提取试剂盒
从培养的动物细胞或组织、植物、酵母、细菌或病毒等单个样品中分步分别提取RNA、基因组DNA和蛋白质的试剂盒。


产品货号

产品规格

目录价

促销价

HX3033S

25 T

332.00

298.00

HX3033M

100 T

1065.00

958.00


产品信息

RNA/DNA/蛋白提取试剂盒是一种简单、方便、快速地从培养的动物细胞或组织、植物、酵母、细菌或病毒等单个样品中分步分别提取RNA、基因组DNA和蛋白质的试剂盒。特别适合用于比较珍贵的样品,不仅适用于少量样品的提取,还可用于大量不同样品的同时处理,可以实现一个样品同时用于RNA、DNA和蛋白的抽提。操作简单,使用便捷,仅需约1 h即可完成RNA、DNA和蛋白质的提取。基于特殊裂解液多组分分离的原理,分步提取同一个样品的RNA、DNA和蛋白质。在样品中加入裂解液后进行裂解或匀浆,使细胞或组织充分裂解,加入氯仿混匀并离心后分为三层,包括上层无色水相(含RNA),中间相(含DNA和蛋白质)和下层红色有机相(含DNA和蛋白质)。RNA溶于水相中,取出水相后用异丙醇沉淀即可获得纯化的RNA;用无水乙醇沉淀中间相和下层红色有机相的可溶物,可获得纯化的DNA;进一步用异丙醇沉淀有机相,可获得纯化的蛋白质。这些沉淀通过洗涤去除其它杂质成分后可用于后续的实验;采用高品质抽提试剂,提供的特殊裂解液可以有效抑制RNA的降解,保持样品中RNA的完整性,既可用于小量样品(例如5-100 mg组织或20-500万个细胞),也适用于大量样品(例如大于1 g的组织或超过一千万的细胞)。通常,每一百万细胞可抽提得到5-15 μg RNA,每毫克组织可抽提得到1-10 μg RNA。

抽提所得的RNA、DNA和蛋白质纯度高,用途广泛。抽提所得的总RNA无蛋白、DNA污染,溶于DEPC水或不含RNase的超纯水后的A260/280值为1.8-2.0,可直接用于RT-PCR、cDNA克隆、纯化mRNA、Northern blot、Dot blot、体外翻译、以及RNase protection assay等实验,也可以用于基因表达芯片分析、高通量测序等对RNA质量要求较高的实验;抽提所得的DNA适用于Southern杂交、基因组DNA的PCR扩增、基因组DNA的甲基化等修饰分析及基因组DNA文库的构建等实验;提取的蛋白可用于SDS-PAGE、Western blot、免疫沉淀等分析。


产品应用

从培养的动物细胞或组织、植物、酵母、细菌或病毒等单个样品中分步分别提取RNA、基因组DNA和蛋白质。


产品保存

4℃保存,一年有效。


产品组分

组分编号

组分名称

规格

25 T

规格

100 T

HX3033-1

Buffer P1(裂解液)

25 ml

100 ml

HX3033-2

Buffer WB1(洗涤液I,首次使用前需加入44 ml/176 ml无水乙醇)

22 ml

88 ml

HX3033-3

Buffer WB2(洗涤液II)

66 ml

260 ml

HX3033-4

Buffer WB3(洗涤液III,次使用前需加入112.5 ml/450 ml无水乙醇)

7.5 ml

30 ml

HX3033-5

Buffer EB1(DNA溶解液)

15 ml

60 ml

HX3033-6

Buffer EB2(蛋白溶解液)

5 ml

20 ml


注意事项

1. 用户需自备无水异丙醇、氯仿、无水乙醇、DEPC水或超纯水(DNase/RNase-Free,Sterile)。

2. 所有离心管,枪头及相关溶液都必须无RNA酶污染。耐高温器物可150ºC烘烤4 h以去除RNA酶,其它器物去除RNA酶可考虑用0.01%的DEPC水浸泡过夜,然后灭菌,烘干。必须戴一次性手套操作,且尽量不要对着RNA样品呼气或说话,以防RNA酶污染。建议戴一次性口罩操作。Buffer P1含有毒物质,避免接触皮肤或吸入。为防止溅入眼睛,请戴防护眼镜或使用透明保护屏。如皮肤接触Buffer P1,请立即用大量去垢剂和水冲洗,如仍有不适,请听取医生意见。

3. 使用冻存的细胞或组织抽提总RNA的效果通常比新鲜的细胞或组织差一些。因为在细胞或组织冻融过程中一些细胞或组织内的RNase会被释放出来并剪切样品。如果不能及时抽提RNA,推荐先加入适量Buffer P1,并裂解样品后冻存。

4. 首次使用前Buffer WB1需添加44 ml/176 ml无水乙醇,Buffer WB3需添加112.5 ml/450 ml无水乙醇,混匀,并在瓶上做好标记。

5. 本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

1. 准备工作:

    Buffer WB1、Buffer WB3第一次使用前需分别加入相应的无水乙醇。

2. 样品的裂解:

a. 细胞裂解或组织匀浆。

(a) 贴壁细胞:吸尽培养液,每10 cm2细胞加入1ml Buffer P1。一般6孔板每孔加1 ml Buffer P1,12孔板每孔加0.5 ml Buffer P1。晃动3-5下,再用枪吹打2-3下,确保全部裂解,然后吸至离心管中。

(b) 悬浮细胞:离心收集细胞,吸尽液体,每500-1000万动植物或酵母细胞,或1000万细菌,加入1 ml Buffer P1。用枪吹打或适当Vortex,确保全部裂解。

注:某些酵母和细菌如裂解不充分,可用匀浆器匀浆,以确保全部裂解。

(c) 组织:先将组织剪切成小块,放入普通玻璃匀浆器内。每50-80 mg组织加入1 ml Buffer P1,匀浆。对于RNA完整性要求比较高的情况,推荐先液氮冷冻组织块,然后在低温下用研钵研碎组织,随后再加入Buffer P1进行总RNA抽提。

b. 对于某些蛋白,多糖或脂含量很高的细胞或组织,Buffer P1裂解后可能会有不溶物或油脂状漂浮物。需12,000×g在4ºC离心10 min,然后吸取澄清的Buffer P1裂解产物至一新的离心管中。

c. 室温孵育5 min,使样品充分裂解。

d. 按每毫升Buffer P1加入0.2 ml氯仿,Vortex混匀或猛烈晃动15 sec,室温孵育2-3 min。

e. 12,000×g在4ºC离心15 min。此时可见分层,分别为无色水相(上层),中间层和红色有机相(下层)。其中上层无色水相用于RNA的提取(步骤3),中间层和下层红色有机相分别用于DNA和蛋白质的提取(步骤4、5)。

3. RNA的提取:

a. 吸取含总RNA的上层无色水相至一新的离心管中,每毫升最初的Buffer P1约可吸取0.5-0.55 ml。

注:不要吸到中间层和红色有机相(下层)。如果要分离DNA和蛋白质可保留这两部分,4ºC可存放过夜。

b. 按每毫升最初的Buffer P1加入0.5 ml无水异丙醇,颠倒数次混匀,室温沉淀10 min。如果希望提取micro RNA等小RNA,推荐-80ºC沉淀过夜。

c. 12,000×g在4ºC离心10 min,在管底可见RNA沉淀,弃上清。

d. 每毫升最初的Buffer P1加入1 ml Buffer WB1,Vortex或颠倒混匀。

e. 7,500×g在4ºC离心5 min,弃上清。再用离心机瞬时离心(>5,000×g),小心吸尽液体。

f. 待RNA略干后,加入20-50 μl DEPC水或超纯水(DNase/RNase-Free,Sterile)溶解,-80ºC冻存。

注:切勿让RNA过分干燥,否则将极难溶解,且测出的A260/280值会低于1.6。

4. DNA的提取:

a. 接RNA提取步骤3a,尽可能去除上层的水相后,保留中间相和红色有机相(下层)。

b. 按每毫升最初的Buffer P1加入0.3 ml无水乙醇,颠倒数次混匀。室温孵育2-3 min。

c. 2,000×g在4ºC离心5 min以沉淀DNA。如果需提取蛋白质,吸取上清至一新的离心管中,-80ºC可存放1-2个月,操作步骤见步骤5。

d. 吸除上清后,用Buffer WB2洗涤DNA沉淀,每毫升最初的Buffer P1加入0.8 ml Buffer WB2。室温孵育30 min,期间轻柔颠倒混匀2-3次。

注:DNA在Buffer WB2中2 h内稳定。

e. 2,000×g在4ºC离心5 min,弃上清。

f. 重复步骤4d-e步骤一次。

注:对于>200 μg的DNA,步骤4d-e须重复两次,即共计3次。

g. 按每毫升最初的Buffer P1加入1.5 ml Buffer WB1洗涤DNA沉淀,室温孵育10-20 min,期间轻柔颠倒混匀2-3次。

注:加入Buffer WB1的DNA沉淀在4ºC可存放1-2个月。

h. 2,000×g在4ºC离心5 min,弃上清。

i. 室温放置晾干DNA沉淀5-15 min,无明显液体后,加入适量Buffer EB1溶解。可60ºC温浴或适当增加DNA溶解液的量以促进DNA溶解。

注:

1) 从50-70 mg组织或者107个细胞中分离的DNA沉淀溶于300-600 μl DNA溶解液,DNA的浓度通常为0.2-0.3 μg/μl。

2) 提取的DNA沉淀可能不易溶于水和中性Tris缓冲液中。

3) 从某些样品(尤其是组织)中提取的DNA中可能包含一些胶状的不溶物,可12,000×g在4ºC离心10 min去除。

5. 蛋白的提取:

a. 接DNA提取步骤4c,取沉淀DNA后的上清。

b. 每毫升最初的Buffer P1加入1.5 ml无水异丙醇,室温孵育10 min。

c. 12,000×g在4ºC离心10 min,弃上清。

d. 用Buffer WB3洗涤蛋白质沉淀。每毫升最初的Buffer P1加入1 ml Buffer WB3,室温孵育20 min。蛋白质在Buffer WB3中,4ºC可保存一个月,-20ºC可保存一年。

e. 7500×g在4ºC离心5 min,弃上清。

f. 重复步骤5d-e 2-3次。

g. 按每毫升最初的Buffer P1加入1.5-2 ml无水乙醇,Vortex混匀。室温孵育20 min。

h. 7500×g在4ºC离心5 min,弃上清。

i. 室温放置晾干蛋白质沉淀5-10 min,用200 μl Buffer EB2溶解蛋白质,反复吸打,可用50ºC温浴使其完全溶解。

j. 10,000×g在4ºC离心10 min去除不溶物。分离得到的蛋白质样品可用于下游实验或-20ºC保存备用。

Q:为什么提取的RNA降解?

A:提取的RNA沉淀没有完全溶解;获取组织后,未立即处理或进行冷冻;细胞可能被胰蛋白酶过度消化;耗材或操作环境中可能含RNase

Q:为什么提取RNA时会有DNA污染?

A:用于样品均质化的裂解液过少;样品可能含有有机溶剂(乙醇、DMSO)、强缓冲液或碱性溶液

Q:为什么DNA完全或部分降解?

A:获取组织后,未立即处理或进行冷冻;样品提取前储存于-20℃,而不是-80℃


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