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RNA提取/动物小RNA提取试剂盒(离心柱式, <200 nt)
动物小RNA提取试剂盒(离心柱式, <200 nt)
动物小RNA提取试剂盒(离心柱式, <200 nt)
动物小RNA提取试剂盒(离心柱式, <200 nt)
从动物组织或培养的动物细胞中提取miRNA等小于200个核苷酸的小RNA的试剂盒。


产品货号

产品规格

目录价

促销价

HX3018

50 T

756.00

680.00


产品信息

动物小RNA提取试剂盒(离心柱式,<200 nt)是一种基于离心柱法从动物组织或培养的动物细胞中安全、快速、便捷、稳定、高效、高质量地提取miRNA等小于200个核苷酸(nucleotide, nt)的小RNA(small RNA)的试剂盒。动物组织或细胞中的RNA按照长度可以分为长链RNA(long RNA)和小RNA(small RNA),长链 RNA通常大于200 nt,而小RNA通常小于200 nt。长链RNA按照是否编码蛋白或多肽可以分为长链非编码RNA(long noncoding RNA, lncRNA)和mRNA。小RNA主要包括非编码的5.8S rRNA、5S rRNA、tRNA、microRNA、siRNA、piRNA、tsRNA、srRNA等。本试剂盒使用安全,通过特殊的柱纯化介质进行小RNA分离纯化,不仅能有效避免传统的Trizol法提取时使用的酚、氯仿等有毒有害有机试剂,也能有效避免使用类似于Trizol的裂解液裂解样品、接着使用氯仿分层、后续再进行柱纯化等涉及的有毒有害有机试剂;使用快速、便捷,采用柱纯化,无需繁琐的RNA沉淀步骤,提取操作过程仅20-25 min,相比于传统的Trizol抽提法,能够有效去除大分子RNA,操作流程显著简化,缩短了提取时间,降低了RNA降解的风险;提取获得的小分子量RNA得率高、纯度好,100万培养动物细胞约能抽提得到1-2 µg小RNA,5 mg小鼠肝脏组织约能抽提得到1-1.5 µg小RNA。适用于新鲜或冻存的动物组织或细胞样品小RNA的提取。样品的用量对提取效果影响较大,样品用量过多会导致在第一次过柱时不能最大程度去除200 nt以上的RNA,通常建议培养细胞的用量不超过100万,动物组织的用量不超过5 mg。A260/A280通常为2.0-2.2。

本试剂盒用于提取18-200 nt小RNA,主要包括5.8S rRNA、5S rRNA、tRNA、microRNA (miRNA),以及short interfering RNA(siRNA)、piRNA、tsRNA等,能够有效去除基因组DNA和200 nt以上的RNA,如28S rRNA、18S rRNA、mRNA等。提取得到的小RNA可用于反转录、RT-PCR、qPCR、Northern等常规实验,也可以用于基因芯片分析(microarray)、高通量测序(high throughput sequencing)等对小RNA质量要求较高的情况。


产品应用

基于离心柱法从动物组织或培养的动物细胞中安全、快速、便捷、稳定、高效、高质量地提取miRNA等小于200个核苷酸(nucleotide, nt)的小RNA(small RNA)。


产品保存

室温保存,一年有效。


产品组分

组分编号

组分名称

规格

50 T

HX3018-1

Buffer S1(裂解液)

16 ml

HX3018-2

Buffer P1(结合液I)

16 ml

HX3018-3

Buffer P2(结合液II)

38 ml

HX3018-4

Buffer WB(洗涤液)

63 ml

HX3018-5

Buffer EB(洗脱液)

5 ml

HX3018-6

RNA纯化柱及废液收集管

100套

HX3018-7

RNA洗脱管

50个


注意事项

1. 对于富含RNase的样品(如动物组织),建议使用前在Buffer S1中添加二硫苏糖醇(Dithiothreitol, DTT)至终浓度为40 mM(如1 ml Buffer S1中加入20 µl 2M DTT)或β-巯基乙醇至终浓度为1%(如1 ml Buffer S1中加入10 µl β-巯基乙醇),含DTT或β-巯基乙醇的Buffer S1可在室温放置1个月。

2. 本试剂盒提供的所有试剂和耗材都是RNase-free,操作时应小心,避免被污染。所有自行准备的试剂和耗材也都应是RNase-free。如果可能有RNase污染,可考虑用0.01%的DEPC水浸泡过夜,然后高温高压灭菌并烘干。操作时应避免对着样品或所使用的试剂盒耗材呼气或说话,以防RNase污染。建议戴一次性口罩操作。

3. 使用冻存的细胞或组织抽提小RNA的效果通常比新鲜的细胞或组织差一些。因为在细胞或组织冻融过程中一些细胞或组织内的RNase会被释放出来并剪切样品中的RNA。

4. 本试剂盒所有操作均在室温进行,操作时无需冰浴。所有离心也均在室温进行。

5. 废液收集管在一次抽提中需多次使用,切勿中途丢弃。Buffer P1、Buffer P2和Buffer WB中含有乙醇,使用后须旋紧瓶盖以防挥发,并须按照易燃试剂的相关规范进行存放和使用。

6. 本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

1. 实验材料的准备:

a. 细胞样品:收集50-100万左右的细胞。对于悬浮细胞,1000-2000 g离心1 min后弃上清,加入300 μl Buffer S1,轻轻吹打8-10次至固悬物溶解、溶液澄清;对于贴壁细胞,吸净培养液后加入300 μl Buffer S1,轻轻吹打5-10次至固悬物溶解、溶液澄清,转移至一洁净离心管内。

b. 组织样品:取5 mg动物组织,置于液氮中研磨成粉末,立即加入300 µl Buffer S1。也可将组织置于1.5 ml离心管中,迅速加入300 µl Buffer S1,用微型电动匀浆器或普通玻璃匀浆器进行匀浆。研磨或匀浆后,轻轻吹打匀浆液8-10次,室温放置3-5 min。然后约14,000 g离心2 min,将上清液移至新的离心管中。对于比较容易裂解且匀浆很充分的组织(如肝组织、脑组织等)可以不用高速离心而直接进入步骤2。

注:细胞的数量不超过100万,动物组织的用量不超过5 mg,细胞或组织用量过多会导致大分子RNA不能去除完全。对于富含RNase的样品,Buffer S1中宜添加DTT至终浓度为40 mM或添加β-巯基乙醇至终浓度为1%。

2. 加入300 µl Buffer P1至裂解产物中,轻轻颠倒混匀3-5次。此时可能会有沉淀物产生,属于正常现象。

3. 将混合物(包括沉淀物)转移至第1个纯化柱内,12,000 g离心30 sec,回收收集管内液体至一新的1.5 ml离心管。

注:对于一些非常特殊的样品,如出现溶液未完全通过时,可延长离心时间至1-2 min,或者加大离心力至16,000 g。对于一些能快速启动达到12,000 g的离心机,离心30 sec已经足够,对于一些启动速度缓慢的离心机本步骤及后续步骤中的30 sec离心宜调整为60 sec。

4. 向溶液中加入700 µl Buffer P2,混匀后,将混合物(包括沉淀物)分两次转移至第2个纯化柱内,每次12,000g离心30 sec后倒弃收集管内液体。

注:加入Buffer P2后溶液总体积超过纯化柱的容量(约750 µl),因此须分成2次过柱,即将一半的混合物(约650 µl)加入纯化柱内后12000 g离心30 sec,倒弃收集管内液体,再将剩余的混合物加入纯化柱内12000 g离心30 sec,并倒弃收集管内液体。

5. 加入600 µl Buffer WB,12,000 g离心30 sec,倒弃收集管内液体。

6. 重复步骤5一次。

7. 最高速(约14,000-16,000 g)离心2 min,去除残留液体。

8. 将RNA纯化柱置于RNA洗脱管中,加入30-50 µl Buffer EB,室温放置2-3 min,最高速离心30 sec,所得溶液即为纯化的小RNA。

注:Buffer EB需要加到纯化柱柱面中央,使其被完全吸收。如需获得更高浓度的样品,可把Buffer EB的体积减小至20 ul,但洗脱下来的总RNA量会相对减少。室温较低时,Buffer EB在37ºC预热片刻对得率有所帮助。此外,洗脱后的溶液再次加回到原纯化柱再离心洗脱一次,可提高得率约10-30%;或者在第一次洗脱后使用新的Buffer EB再洗脱一次,会获得约为第一次洗脱量10-35%的小RNA。

Q:为什么RNA得率过低(产量低)?

A:样本量过多或过少;组织/细胞没有完全裂解;RNA在吸附柱上结合不完全;离心速度或时间不足;RNA没有完全洗脱;样本本身RNA含量低或降解严重等。

Q:为什么RNA会降解?

A:RNase污染;实验操作温度过高;细胞/组织处理不当等。

Q:为什么会有基因组DNA污染?

A:样本量过大、裂解不充分或gDNA清除步骤操作不当等。

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