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RNA提取/动物RNA提取试剂盒(离心柱式,>200 nt)
动物RNA提取试剂盒(离心柱式,>200 nt)
动物RNA提取试剂盒(离心柱式,>200 nt)
动物RNA提取试剂盒(离心柱式,>200 nt)
从动物组织或培养的动物细胞中提取长度大于200个核苷酸的RNA的试剂盒。


产品货号

产品规格

目录价

促销价

HX3017S

12 T

150.00

135.00

HX3017M

50 T

503.00

452.00

HX3017L

200 T

1710.00

1539.00


产品信息

动物RNA提取试剂盒(离心柱式,>200 nt)是一种基于离心柱法从动物组织或培养的动物细胞中安全、快速、便捷、稳定、高效、高质量地提取长度大于200个核苷酸(nucleotide, nt)的RNA的试剂盒。动物组织或细胞中的RNA按照长度可以分为长链RNA(long RNA)和小RNA(small RNA),长链RNA通常大于200 nt,而小RNA通常小于200 nt。长链RNA按照是否编码蛋白或多肽可以分为长链非编码RNA(long noncoding RNA, lncRNA)和mRNA。本试剂盒使用安全,通过特殊的柱纯化介质进行RNA分离纯化,能有效避免传统的Trizol法提取时使用的酚、氯仿等有毒有害有机试剂;使用快速、便捷,采用柱纯化,无需繁琐的RNA沉淀步骤,提取操作过程仅15-20 min。相比于传统的Trizol提取法,操作流程显著简化,缩短了提取时间,降低了RNA被降解的风险;抽提RNA的得率高,提取效果经反复测试,100万个HeLa细胞能提取得到约15-20 µg RNA,20 mg小鼠肝组织能提取得到约25-35 µg RNA,20 mg小鼠脑组织中提取得到约10-20 µg RNA(新鲜样品的得率高于冻存样品)。提取得到的RNA的A260/A280通常为2.0-2.2。A260/A230通常为1.9-2.1,纯度高。本产品用于纯化200 nt以上的RNA,对小于200 nt的small RNA即小RNA(如5.8S rRNA、5S rRNA、tRNA、miRNA、piRNA等)被选择性地去除,适用于新鲜或冻存的动物组织或细胞RNA的提取,推荐的细胞用量为50-100万(上限可达1000万),组织用量为15-20 mg(上限可达30 mg)。对于不同的组织或细胞上限会有所差别,例如小鼠肝脏组织的上限可达30 mg,但肌肉组织的上限为20 mg。

提取获得的大于200个核苷酸的RNA可以用于各种常规用途,可用于反转录、RT-PCR、qPCR、Northern、点杂交、纯化mRNA、体外翻译、RNase protection assay、cDNA克隆等下游实验;也可用于基因表达芯片分析、高通量测序等对RNA质量要求较高的情况。


产品应用

基于离心柱法从动物组织或培养的动物细胞中安全、快速、便捷、稳定、高效、高质量地提取长度大于200个核苷酸(nucleotide, nt)的RNA。


产品保存

室温保存,一年有效。


产品组分

组分编号

组分名称

规格

12 T

规格

50 T

规格

200 T

HX3017-1

Buffer P1(裂解液)

8 ml

32 ml

125 ml

HX3017-2

Buffer P2(结合液)

8 ml

32 ml

125 ml

HX3017-3

Buffer WB1(洗涤液I)

8 ml

32 ml

125 ml

HX3017-4

Buffer WB2(洗涤液II)

15 ml

63 ml

125 ml×2

HX3017-5

Buffer EB(洗脱液)

1.2 ml

5 ml

15 ml

HX3017-6

RNA纯化柱及废液收集管

12套

50套

200套

HX3017-7

RNA洗脱管

12个

50个

200个


注意事项

1. 对于富含RNase的样品(如动物组织),建议使用前在Buffer P1中添加二硫苏糖醇(Dithiothreitol, DTT)至终浓度为40 mM(例如1 ml Buffer P1中加入20 µl 2 M DTT)或β-巯基乙醇至终浓度为1%(如1 ml Buffer P1中加入10 µl β-巯基乙醇)。含DTT或β-巯基乙醇的Buffer P1可在室温放置1个月。

2. 通过本试剂盒提取得到的RNA已经去除绝大多数DNA,通常情况无需DNase处理。后续如进行某些对DNA残留较敏感的实验时,可以在使用说明中步骤4离心后,在纯化柱中加入适量DNase I进行消化,具体请参考使用说明。

3. 本试剂盒提供的所有试剂和耗材都是RNase-free,操作时应小心,避免被污染。所有自行准备的试剂和耗材也都应是RNase-free。如果可能有RNase污染,可考虑用0.01%的DEPC水浸泡过夜,然后高温高压灭菌并烘干。操作时应避免对着样品或所使用的试剂盒耗材呼气或说话,以防RNase污染。建议戴一次性口罩操作。

4. 使用冻存的细胞或组织提取RNA 的效果通常比新鲜的细胞或组织差一些。因为在细胞或组织冻融过程中一些细胞或组织内的RNase会被释放出来并剪切样品中的RNA。

5. 本试剂盒所有操作均在室温进行,操作时无需冰浴。所有离心也均在室温进行。

6. 废液收集管在一次提取中需多次使用,切勿中途丢弃。Buffer P2、Buffer WB1、2中含有乙醇,使用后须旋紧瓶盖以防挥发,并须按照易燃试剂的相关规范进行存放和使用。

7. 本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

1. 样品的准备:

a. 细胞样品:收集50-100万左右的细胞。对于悬浮细胞,1000-2000×g离心1 min后弃上清,加入300 μl Buffer P1,轻轻吹打8-10次至固悬物溶解、溶液澄清;对于贴壁细胞,吸净培养液后加入300 μl Buffer P1,轻轻吹打5-10次至固悬物溶解、溶液澄清,转移至一洁净离心管内。

b. 组织样品:取15-20 mg动物组织,置于液氮中研磨成粉末,立即加入600 µl Buffer P1。也可将组织置于1.5 ml离心管中,迅速加入600 µl冰浴预冷的Buffer P1,用微型电动匀浆器或普通玻璃匀浆器进行匀浆。研磨或匀浆后,轻轻吹打匀浆液8-10次,室温放置3-5 min。然后约14,000×g离心2 min,将上清液移至新的离心管中。对于比较容易裂解且匀浆很充分的组织(如肝组织、脑组织等)可以不用高速离心而直接进入步骤2。

注:细胞的数量一般不超过500万,不超过100万细胞宜使用300 µl Buffer P1,多于100万细胞宜使用600 µl Buffer P1。动物组织的用量一般不超过30 mg,用量过多可能会因裂解不充分导致得率下降。组织样品在裂解和离心后,离心管下部可能会有一些胶状物质,宜作为上清转移至下一步操作。如果弃除胶状物,会导致得率下降约30-50%。后续加入Buffer P2后胶状物会消失。离心是为了去除未匀浆充分的明显块状物。如果裂解后仍有粘稠物,需增加吹打次数至溶液完全澄清。对于富含RNase的样品,Buffer P1中宜添加DTT至终浓度为40 mM或添加β-巯基乙醇至终浓度为1%。

2. 加入等体积Buffer P2至裂解产物中,轻轻颠倒混匀3-5次。此时可能会有沉淀物产生,属于正常现象。

3. 将混合物(包括沉淀物)转移至纯化柱内,12,000×g离心30 sec,倒弃收集管内液体。

注:当裂解产物的体积大于300 µl时,在加入等体积Buffer P2后,总体积会超过纯化柱的容量,这时应分成两次过柱,即将一半的混合物过柱后,再将剩余的混合物重复步骤3一次。对于一些特殊的样品,如出现溶液未完全通过时,可延长离心时间至1-2 min,或者加大离心力至16,000×g。对于一些能快速启动达到12,000×g的离心机,离心30 sec已经足够,对于一些启动速度缓慢的离心机本步骤及后续步骤中的30 sec离心宜调整为60 sec。

4. 加入600 µl Buffer WB1,12,000×g离心30 sec,倒弃收集管内液体。

5. 选做:抽提得到的RNA已经去除绝大多数DNA,通常情况无需DNase处理。后续如进行某些对DNA残留较敏感的实验时,可在本步骤离心后,在纯化柱中加入80 µl含10 U DNase I的酶溶液(每80 µl酶溶液按照71.8 µl水加8 µl 10X Reaction Buffer再加0.2 µl 50 U/μl DNase I混合配制而成),室温放置消化15 min。消化结束后,不需要进行离心等任何额外的操作,直接进入步骤5。

6. 加入600 µl Buffer WB2,12,000×g离心30 sec,倒弃收集管内液体。

7. 重复步骤6一次。

8. 最高速(约14,000-16,000×g)离心2 min,去除残留的液体。

9. 将RNA纯化柱置于RNA洗脱管中,加入30-50 µl Buffer EB,室温放置2-3 min,最高速离心30 sec,所得溶液即为纯化的RNA。

注:Buffer EB需要加到纯化柱柱面中央,使其被完全吸收。如需获得更高浓度的样品,可把Buffer EB的体积减小至20 µl,但洗脱下来的RNA量会相对减少。室温较低时,Buffer EB在37ºC预热片刻对得率有所帮助。此外,洗脱后的溶液再次加回到原纯化柱再离心洗脱一次,可提高得率约10-30%;或者在第一次洗脱后使用新的Buffer EB再洗脱一次,会获得约为第一次洗脱量15-40%的RNA。

Q:为什么RNA得率过低(产量低)?

A:样本量过多或过少;组织/细胞没有完全裂解;RNA在吸附柱上结合不完全;离心速度或时间不足;RNA没有完全洗脱;样本本身RNA含量低或降解严重等。

Q:为什么RNA会降解?

A:RNase污染;实验操作温度过高;细胞/组织处理不当等。

Q:为什么会有基因组DNA污染?

A:样本量过大、裂解不充分或gDNA清除步骤操作不当等。


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