Menu
RNA提取/动物总RNA提取试剂盒(磁珠法)
动物总RNA提取试剂盒(磁珠法)
动物总RNA提取试剂盒(磁珠法)
动物总RNA提取试剂盒(磁珠法)
从动物组织或培养的动物细胞中安全、便捷、稳定、高效、高质量地抽提总RNA的试剂盒。


产品货号

产品规格

目录价

促销价

HX3015S

10 T

155.00

139.00

HX3015M

50 T

652.00

586.00

HX3015L

200 T

2209.00

1988.00


产品信息

动物总RNA提取试剂盒(磁珠法)是一种使用新型核酸纯化介质包被的磁珠,可以从动物组织或培养的动物细胞中安全、便捷、稳定、高效、高质量地抽提总RNA的试剂盒。动物组织或细胞中的RNA按照长度可以分为长链RNA(long RNA)和小RNA(small RNA),长链RNA通常大于200 nt,而小RNA通常小于200 nt。长链RNA按照是否编码蛋白或多肽可以分为长链非编码RNA(long noncoding RNA, lncRNA)和mRNA。小RNA主要包括非编码的5.8S rRNA、5S rRNA、tRNA、microRNA、siRNA、piRNA、tsRNA、srRNA等。本试剂盒使用安全,通过特殊的磁珠纯化介质进行RNA分离纯化,能有效避免传统的Trizol法抽提时使用的酚、氯仿等有毒有害有机试剂;使用便捷,采用磁珠纯化,无需繁琐的RNA沉淀步骤,抽提操作过程仅15-20 min。相比于传统的Trizol抽提法,本试剂盒的操作流程显著简化,缩短了抽提时间,降低了RNA被降解的风险;抽提RNA的得率高,抽提效果经反复测试,100万个HeLa细胞能抽提得到约15-20 µg RNA,20 mg小鼠肝组织能抽提得到约25-35 µg RNA,20 mg小鼠脑组织能抽提得到约10-20 µg RNA(新鲜样品的得率高于冻存样品)。本试剂盒适用于新鲜或冻存的动物组织或细胞RNA的抽提,推荐的细胞用量为50-100万(上限可达500万),组织用量为15-20 mg(上限可达30 mg)。不同的组织或细胞用量上限会有所差别,例如小鼠肝脏组织的上限可达30mg,但肌肉组织的上限约为20 mg。抽提获得的RNA包含大分子量RNA和小RNA(<200 nt),也常被称为总RNA(Total RNA),可以用于各种常规分子生物学和生化检测等用途。抽提得到的RNA可用于反转录、RT-PCR、qPCR、Northern、点杂交、纯化mRNA、体外翻译、RNase protection assay、cDNA克隆等下游实验;也可用于基因表达芯片分析、高通量测序等对RNA质量要求较高的情况。


产品应用

从动物组织或培养的动物细胞中安全、便捷、稳定、高效、高质量地抽提总RNA。


产品保存

除DNase和Reaction Buffer(10X)以外,室温保存,一年有效。DNase和Reaction Buffer(10X)-20ºC保存,一年有效。其中Buffer Beads长期不使用时,4ºC保存,可以保存更长时间。


产品组分

组分编号

组分名称

规格

10 T

规格

50 T

规格

200 T

HX3015-1

Buffer Beads(RNA磁珠悬浮液)

0.2ml

1 ml

4 ml

HX3015-2

Buffer P1(裂解液)

6 ml

30 ml

120 ml

HX3015-3

Buffer P2(结合液,首次使用前加入1.2/6/24 ml无水乙醇)

4.8 ml

24 ml

100 ml

HX3015-4

Buffer WB1(洗涤液I)

6.5 ml

32 ml

125 ml

HX3015-5

Buffer WB2(洗涤液II)

13 ml

63 ml

125 ml×2

HX3015-6

Buffer EB(洗脱液)

1 ml

5 ml

20 ml

HX3015-7

DNase

20 μl

100 μl

400 μl

HX3015-8

Reaction Buffer (10X)

100 µl

500 µl

2 ml


注意事项

1. 需自备磁分离装置。

2. 对于富含RNase的样品(如动物组织),建议使用前在Buffer P1中添加二硫苏糖醇(Dithiothreitol, DTT)至终浓度为40 mM(例如1 ml裂解液中加入20 µl 2M DTT)或β-巯基乙醇至终浓度为1%(如1 ml Buffer P1中加入10 µl β-巯基乙醇)。含DTT或β-巯基乙醇的Buffer P1可在室温放置1个月。

3. 如果不使用试剂盒提供的DNase I进行处理,抽提得到的RNA会含有少量的DNA。后续如进行某些对DNA残留较敏感的实验时,需要在使用说明中步骤4后,在磁珠中加入适量DNase I进行消化,具体请参考使用说明。

4. 建议使用推荐的细胞数或组织量用于RNA的抽提,否则可能导致RNA Buffer Beads聚集而使基因组DNA消化不充分。如果基因组DNA消化不充分,可以加大DNase I的用量或延长孵育时间。

5. 本试剂盒提供的所有试剂都是RNase-free,操作时应小心,避免被RNase污染。所有自行准备的试剂和耗材也都应是RNase-free。如果耗材可能有RNase污染,可考虑用0.01%的DEPC水浸泡过夜,然后高温高压灭菌并烘干。操作时应避免对着样品或所使用的试剂盒耗材呼气或说话,以防RNase污染。建议戴一次性口罩操作。

6. 使用冻存的细胞或组织抽提RNA的效果通常比新鲜的细胞或组织略差一些。因为在细胞或组织冻融过程中一些细胞或组织内的RNase会被释放出来并导致样品中的RNA少量或部分降解。

7. Buffer P2首次使用前要加入无水乙醇,混匀,并在瓶上做好标记(4.8 ml结合液加入1.2 ml,24 ml结合液加入6 ml,100 ml结合液加入24 ml无水乙醇)。

8. 本试剂盒所有操作均在室温进行,操作时无需冰浴。

9. Buffer P2、Buffer WB1、Buffer WB2中含有一定浓度的乙醇,使用后须旋紧瓶盖以防挥发,并须按照易燃试剂的相关规范进行存放和使用。

10. 本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

1. 样品准备:

a. 细胞样品:收集50-100万左右的细胞。对于悬浮细胞,1000-2000×g离心1 min后弃上清,加入300 µl Buffer P1,轻轻吹打8-10次至固悬物溶解、溶液澄清;对于贴壁细胞,吸净培养液后加入300 μl Buffer P1,轻轻吹打5-10次至固悬物溶解、溶液澄清,转移至一洁净离心管内。

b. 组织样品:取15-20 mg动物组织,置于液氮中研磨成粉末,立即加入600 µl Buffer P1。也可将组织置于1.5 ml离心管中,迅速加入600 µl冰浴预冷的Buffer P1,用微型电动匀浆器或普通玻璃匀浆器匀浆,轻轻吹打匀浆液8-10次,室温放置3-5 min。然后约14,000×g离心2 min,将上清液移至新的离心管中。对于比较容易裂解且匀浆很充分的组织(如肝组织、脑组织等)可以不用高速离心而直接进入步骤2。

注:细胞的数量一般不超过200万,最多不超过500万,不超过100万细胞宜使用300 µl Buffer P1,多于100万细胞宜使用600 µl Buffer P1。动物组织的用量一般不超过30 mg,用量过多可能会因裂解不充分导致得率下降。组织样品在裂解和离心后,离心管下部可能会有一些胶状物质,宜作为上清转移至下一步操作。如果弃除胶状物,会导致得率下降约30-50%。后续加入Buffer P2后胶状物会消失。离心是为了去除未匀浆充分的明显块状物。如果裂解后仍有粘稠物,需增加吹打次数至溶液完全澄清。对于富含RNase的样品,Buffer P1中宜添加DTT至终浓度为40 mM或添加β-巯基乙醇至终浓度为1%。

2. 加入等体积Buffer P2至裂解产物中,轻轻颠倒混匀3-5次。此时可能会有沉淀物产生,属于正常现象。

3. 将混合物(包括沉淀物)转移至新的1.5 ml离心管内,加入20 µl Buffer Beads(使用前务必混匀),轻柔混匀后,室温放置3-5 min。将离心管置于磁力架的磁场中,待磁珠完全聚集后,小心吸除残液。

注:磁珠在使用前一定要涡旋或震荡混匀。如有必要,可适当增加磁珠用量,延长结合时间以提高得率。

4. 加入600 µl Buffer WB1,轻柔震荡使磁珠分散开,颠倒两次后将离心管置于磁力架的磁场中,待磁珠完全聚集后,尽量吸净残液。

5. 选做:在Buffer Beads中加入80 µl含2 μl DNase的酶溶液(每80 µl酶溶液按照70 µl水加8 µl Reaction Buffer(10X)加2 µl DNase混合配制而成),37ºC放置消化15-30 min。如果略去本步骤,抽提得到的RNA会含有少量基因组DNA。

6. 加入600 µl Buffer WB2,轻柔震荡使磁珠分散开,颠倒两次后将离心管置于磁力架的磁场中,待磁珠完全聚集后,尽量吸净残液。

7. 重复步骤6一次。

8. 将离心管室温放置5-10 min,或置于37ºC鼓风烘箱5 min,确保残留的乙醇等微量液体完全挥发。

9. 加入50-100 μl Buffer EB,轻柔震荡使磁珠悬于溶液中,室温孵育3-5 min,其间甩动离心管1-2次。将离心管置于磁场中,待磁珠完全聚集后,小心吸取溶液至新离心管中,置于-20ºC保存。所得溶液即为纯化的RNA。

注:如需获得更高浓度的样品,可把Buffer EB的体积减小至20 µl,但洗脱下来的RNA量会相对减少。室温较低时,洗脱液在37ºC预热片刻对得率有所帮助。此外,洗脱后的溶液再次加回到原磁珠再洗脱一次,可提高得率约10-30%;或者在第一次洗脱后使用新的Buffer EB再洗脱一次,会获得约为第一次洗脱量15-40%的RNA。

Q:为什么RNA得率过低(产量低)?

A:样本量过多或过少;组织/细胞没有完全裂解;离心速度或时间不足;RNA没有完全洗脱;样本本身RNA含量低或降解严重等。

Q:为什么RNA会降解?

A:RNase污染;实验操作温度过高;细胞/组织处理不当等。

Q:为什么会有基因组DNA污染?

A:样本量过大、裂解不充分或gDNA清除步骤操作不当等。

Recommended product推荐产品