多糖多酚植物总RNA提取试剂盒（离心柱式）

RNA提取/多糖多酚植物总RNA提取试剂盒（离心柱式）

从富含多糖多酚或淀粉的植物组织（如果实、种子等）、真菌等进行RNA提取的试剂盒。

产品货号	产品规格	目录价	促销价
HX3014	50 T	856.00	770.00

▍产品信息

多糖多酚植物总RNA提取试剂盒（离心柱式）是一种能从富含多糖多酚或淀粉的植物组织（如果实、种子等）、真菌等进行RNA提取的试剂盒。采用离心柱方式提取植物总RNA，无需使用有毒的苯酚-氯仿提取，整个提取过程只需30~40 min，即可获得多糖多酚植物总RNA，更安全且节约时间，适用于不同植物的根、茎、叶片和芽等部位的植物总RNA提取，具有稳定、高效、安全、便捷的优点。试剂盒采用膜过滤及 DNaseI 消化，可更高效地去除基因组 DNA，提取的总 RNA 纯度高，基本没有蛋白和其他杂质的污染，可直接用于 RT-PCR、NorthernBlot、Poly A 纯化，核酸保护和体外翻译等实验。

▍产品应用

从富含多糖多酚或淀粉的植物组织（如果实、种子等）、真菌等进行RNA提取。

▍产品保存

室温保存12 个月，RNase-free DNase置于-20℃保存。

▍产品组分

组分编号	组分名称	规格 50 T
HX3014-1	Buffer P1（裂解液，加入β-巯基乙醇至终浓度5%）	30 ml
HX3014-2	RNase-free DNase	500 µL
HX3014-3	Buffer DB	3.5 mL
HX3014-4	Buffer P2（去蛋白液）	40 mL
HX3014-5	Buffer WB（洗涤液，第一次使用前需加入48 mL无水乙醇）	12 mL
HX3014-6	Buffer EB（洗脱液）	10 mL
HX3014-7	过滤柱	50套
HX3014-8	吸附柱	50套
HX3014-9	1.5 ml离心管（DNase/RNase-free）	50个

▍注意事项

1. 由于植物样品种类的多样性，且同一植物的不同生长发育阶段和不同组织的RNA含量都不相同，请根据具体实验情况选择合适的植物材料用量。

2. 使用无RNase的塑料制品和枪头避免交叉污染，经常更换新手套。因为皮肤经常带有细菌、汗液及RNase等，可能导致RNA降解。

3. RNA在Buffer P1中时不会被RNase降解，但提取后继续处理过程中应使用不含RNase的塑料和玻璃器皿；玻璃器皿可在150℃烘烤4h，塑料器皿可在0.5 M NaOH中浸泡10 min，然后用水彻底清洗、灭菌。

4. Buffer P1在储存时可能会形成沉淀，若有沉淀出现，请加热溶解后使用。

5. 操作前请根据样品数量在Buffer P1中加入β-巯基乙醇至终浓度5%，现配现用，例如1 ml Buffer P1中加入50 μl β-巯基乙醇的比例。加过β-巯基乙醇的Buffer P1置于2~8℃可保存一个月。

6. RNase-free DNase工作液配制：10 µL RNase-free DNase+70 µL Buffer DB，轻轻吹打混匀，现配现用。

7. 第一次使用前应在Buffer WB中加入48 mL的无水乙醇，混匀，并在瓶上做好标记。

8. 本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药品，不得存放于普通住宅内。为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

1. 样品处理：取50~100 mg植物组织样品，使用液氮将样品充分研磨至粉末状，立即加入500 µL Buffer P1（使用前请先检查是否已加入β-巯基乙醇），高速涡旋震荡混匀。

注：对于预期RNA得率小于10 μg的样本，请使用100 mg的样本量；对于富含淀粉的样品或成熟叶片，请将Buffer P1用量增加至700 μL。

2. 12,000 rpm（~13,400×g）离心 2 min。

3. 将上清液转移至过滤柱中，12,000 rpm（~13,400×g）离心2 min，小心吸取收集管中的上清至1.5 ml RNase-Free的离心管中，吸头尽量避免接触收集管中的细胞碎片沉淀。

4. 加入0.4 倍滤液体积无水乙醇，用移液枪吸打3~5次充分混匀（此时可能会出现沉淀），将得到的溶液和沉淀一起转入吸附柱中，12,000 rpm（~13,400×g）离心15 sec，倒掉收集管中的废液，将吸附柱放回收集管中。

5. 向吸附柱中加入350 μL Buffer P2，12,000 rpm（~13,400×g）离心1 min，倒掉收集管中的废液，将吸附柱放回收集管中。

6. RNase-free DNase 工作液配制：10 µL RNase-free DNase+70 µL Buffer DB，轻轻吹打混匀。

7. 向吸附柱中央加入80 μL的DNase I 工作液，室温放置15 min。

8. 向吸附柱中加入350 μL Buffer P2，12,000 rpm（~13,400×g）离心1 min，倒掉收集管中的废液，将吸附柱放回收集管中。

9. 向吸附柱中加入500 μL Buffer WB（使用前请先检查是否已加入乙醇），室温静置2 min，12,000 rpm（~13,400×g）离心1~2 min，倒掉收集管中的废液，将吸附柱放回收集管中。

10. 重复步骤9一次。

11. 12,000 rpm（~13,400×g）离心 3 min，倒掉废液。将吸附柱置于室温放置数分钟，以彻底晾干吸附柱中残余的Buffer WB。

注：本步骤目的是将吸附柱中残余的Buffer WB去除，Buffer WB的残留，可能会影响后续的实验。

12. 将吸附柱放入一个新的1.5 ml RNase-Free离心管中，向吸附膜的中间部位悬空滴加30~100 μL Buffer EB，室温放置2 min，12,000 rpm（~13,400×g）离心2 min，得到 RNA溶液，将洗脱的RNA置于-80℃保存（洗脱液体积过小影响回收效率，柱子最小的洗脱体积是30 µL）。

下载产品使用说明书

Q：样品要怎样预处理？

A：快速操作：植物组织采集后立即液氮冷冻，防止RNA降解。

充分研磨：确保组织在液氮中彻底研磨成细粉，避免残留块状物影响裂解效率。

抑制RNase活性：Buffer P1中需含强变性剂（如异硫氰酸胍）或β-巯基乙醇，以抑制植物中丰富的RNase。

Q：怎样洗脱RNA？

A：无RNase水预热：用50-60℃的无RNase水洗脱可提高得率（避免高温破坏RNA）。

洗脱体积：少量多次（如30 μL×2次）比单次大体积洗脱更高效。

离心前静置：洗脱时静置1-2 min再离心，增加RNA溶出效率。

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